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Formation pratique en biochimie et biologie moléculaire

  • Cours (CM) 14h
  • Cours intégrés (CI) -
  • Travaux dirigés (TD) 22h
  • Travaux pratiques (TP) 50h
  • Travail étudiant (TE) -

Langue de l'enseignement : Français

Description du contenu de l'enseignement

Description de différentes méthodes de clonage ; de purification de protéines, par differentes techniques chromatographiques, générées par génie génétique ; séparation des protéines et des acides nucléiques utilisés en laboratoire ; détermination des paramètres moléculaires d'une protéine.

COURS
- PCR et Clonage : enzymes de restriction, PCR (classique et quantitative), ligation, clonage par restriction et nouvelles technologies (Gateway, Gibson assembly), purification d’ADN (miniprep).
- Purification de protéines par differentes méthodes chromatographiques
- Séparation de protéines et d'acides nucléiques par éléctrophorèse
- Centrifugation

TD :
- préparation aux TP - intégration de différents concepts de calculs aux situations rencontrées en TP
- clonage, chromatographies, centrifugation

TP :
Biologie moléculaire : analyse d’ADN plasmidique, issue de clonage, par digestion aux enzymes de restriction et par PCR pour sélectionner le plasmide ayant la construction dans le bon sens et en phase de lecture avec l’étiquette. Transformation bactérienne.
Séparation de macromolécules : séparation de protéines et d'acides nucléiques par chromatographie d’échange d’ions. Analyses des fractions par spectrophotométrie et électrophorèse. Purification de protéines de fusion recombinantes par chromatographie d’affinité. Analyse par électrophorèse des fractions.
Enzymologie : bilan de purification d’une enzyme. Détermination des parametres cinétiques.
 

Compétences à acquérir

Les CM, les TD et les TP apportent à l’étudiant les connaissances nécessaires pour acquérir les compétences suivantes:
  • Bases théoriques et pratiques pour effectuer un clonage en vue de la surexpression d’une protéine recombinante ayant une étiquette. Choix des oligonucléotides pour amplifier la séquence codante et pour le clonage en phase de lecture avec l’étiquette ; ligation ; transformation ; sélection du « bon » plasmide.
  • Savoir utiliser les techniques de base pour la purification et analyse d’une protéine recombinante.
  • Bases pratiques pour la caractérisation, par étude cinétique, d’une enzyme.
  • Analyser et présenter les résultats expérimentaux obtenus.

Contact

Faculté des sciences de la vie

28 RUE GOETHE
67083 STRASBOURG
0368851810

Responsable

Daniela Lener-Ory


LICENCE - Sciences de la vie

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